Proteine wirken selten allein, sondern interagieren miteinander, um verschiedene Zellfunktionen auszuführen.
Die Untersuchung dieser Protein-Protein-Interaktionen liefert wichtige Einblicke in eine Vielzahl von biologischen Prozessen.
Proteine erleichtern die meisten biologischen Prozesse in einer Zelle. Dazu gehören Genexpression, Zellwachstum, Proliferation, Aufnahme von Nährstoffen, Morphologie, Motilität, interzelluläre Kommunikation und Apoptose.
Die Proteinexpression ist ein dynamischer Prozess, der auf verschiedene Reize reagiert. Bestimmte Proteine werden für bestimmte Aufgaben nicht immer exprimiert oder aktiviert. Auch die Proteinexpression der Zellen variiert, was die Untersuchung der Proteinfunktion im entsprechenden biologischen Kontext erschweren kann. Durch sorgfältige Untersuchung und Analyse können diese Herausforderungen jedoch überwunden werden.
Vor den späten 1990er Jahren konzentrierten sich die Proteinfunktionsanalysen primär auf einzelne Proteine. Da die meisten Proteine jedoch mit anderen Proteinen interagieren müssen, um zu funktionieren, sollten sie im Kontext ihrer interagierenden Partner untersucht werden. Seit der Veröffentlichung des menschlichen Genoms und der Entwicklung der Proteomik ist es unerlässlich, die Proteininteraktionen zu verstehen und biologische Netzwerke zu identifizieren, um ihre Funktion in der Zelle zu verstehen.
Zu den wichtigen Arten von Proteininteraktionen gehören:
Bei Protein-Protein-Interaktionen interagieren Proteine miteinander, um bestimmte Funktionen in Zellen zu erfüllen.
Da fast alle biologischen Prozesse eine oder mehrere PPI umfassen, hilft uns deren Untersuchung dabei, die Interaktionen zwischen molekularen Mechanismen innerhalb dieser Prozesse zu verstehen, einschließlich:
Protein-Protein-Interaktionen können mit verschiedenen experimentellen Techniken untersucht werden, von denen jede einzigartige Vorteile und Einschränkungen mit sich bringt. Die Erkenntnisse, die diese Studien liefern, hängen von der ausgewählten Analysemethode ab.
Zu den am weitesten verbreiteten PPI-Analysemethoden gehören u. a.:
Methode | Beschreibung | Malvern Panalytical-Gerät |
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Kernspinresonanzspektroskopie (NMR) | Die NMR-Spektroskopie liefert strukturelle Informationen auf atomarer Ebene und zeigt Details über Konformationsveränderungen von Proteinen bei der Bindung auf. | -- |
Tandem Affinity Purification-Mass Spectroscopy (TAP-MS) | TAP liefert einen gereinigten Proteinkomplex, der auf einem Massenspektrometer (MS) ausgeführt werden kann, um Protein-Protein-Interaktionen zuzuordnen. | -- |
Gitter-gekoppelte Interferometrie (GCI) | Dank dieser markerfreien, oberflächenbasierten Echtzeittechnologie können Forscher schnell und genau kinetische Raten messen, die Affinität bestimmen und die Konzentrationen selbst in geringer Menge vorkommender interagierender Analyte in Rohproben wie Biofluiden überwachen. | |
Oberflächenplasmonresonanz (SPR) | SPR ermöglicht die Echtzeitüberwachung von Proteininteraktionen an der Oberfläche eines Sensorchips und ermöglicht so eine präzise Bestimmung der Bindungskinetik und -affinität. SPR ist ein markerfreies Verfahren, bei dem relativ kleine Materialmengen verwendet werden. Dies ermöglicht eine präzise und genaue Analyse von Proteininteraktionen. | -- |
Isothermale Titrationskalorimetrie (ITC) | ITC misst die bei Bindungen freigesetzte oder absorbierte Wärme und liefert wichtige thermodynamische Informationen zum Verständnis der Interaktionsmechanismen. | |
Ähnliche Technologien: | ||
Dynamische Differenzkalorimetrie (DSC) | DSC misst die thermische Stabilität von Proteinen, was hilfreich für Stabilitätsstudien, Beurteilungen der Biosimilarität sowie für die Chargenvergleichbarkeit ist. Bei der DSC wird die thermische Stabilität gemessen, indem die Wärmeänderung bei der Denaturierung eines Moleküls bei konstanter Erwärmungsrate überwacht wird. | |
Elektrophoretische Lichtstreuung (ELS)
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ELS misst die Partikelmobilität und -ladung. DLS misst die Partikelgröße von dispersen Systemen mit einer Größenordnung von Sub-Nanometern bis hin zu mehreren Mikrometern Durchmesser. Durch die Kombination dieser Techniken erhalten Sie einen umfassenderen Überblick über Protein-Protein-Interaktionen, was nützlich für die Entwicklung von Interventionen ist, die auf spezifische molekulare Interaktionen abzielen. |
In mehreren Studien wurden Malvern Panalytical-Geräte zur Analyse von Protein-Protein-Interaktionen (PPI) verwendet. Hier einige Beispiele:
Mithilfe von Gitter-gekoppelter Interferometrie (GCI) und dem WAVEsystem wurden die Bindung zwischen mehreren Pflanzenrezeptoren und ihren Liganden sowie die Rolle eines Korezeptors (SERK3) untersucht. Wenn die einzelnen Rezeptoren stark verschiedene Bindungsaffinitäten für ihre jeweiligen Liganden aufweisen, verbindet sich die SERK3-Ektodomäne mit den Liganden-assoziierten Rezeptoren mit ähnlicher Bindungskinetik.
GCI und das WAVEsystem wurden verwendet, um Interaktionen mit synthetisch erzeugten „Rezeptor-Nachahmern“ von Zelloberflächenrezeptoren zu analysieren, die häufig als Wirkstoffziele von Interesse sind.
Die isotherme Titrationskalorimetrie (ITC) auf dem MicroCal zeigte, dass eine Veränderung des Proteinrückgrats die Protein-Protein-Interaktion in spannungsgesteuerten Kalziumkanälen verändern kann.
In diesem Artikel wurden die Verwendung von ITC und anderen Technologien zur Untersuchung der Eigenschaften von eingeschränkten Peptiden untersucht, die Protein-Protein-Interaktionen hemmen.
WAVEsystemBioanalytische Instrumente der nächsten Generation für die Arzneimittelforschung und Biowissenschaften sowohl für die Industrie als auch die akademische Forschung |
MicroCal PEAQ-ITCHochempfindliche Messung aller Bindungsparameter. |
MicroCal PEAQ-DSCHochwertige Analysen der Proteinstabilität für Forschungsanwendungen |
Zetasizer Advance ProduktlinieLichtstreuung für jede Anwendung |
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Technologie | ||||
Grating-coupled interferometry (GCI) | ||||
Isotherme Titrationskalorimetrie (ITC) | ||||
Dynamische Differenzkalorimetrie (DDK) | ||||
Elektrophoretische Lichtstreuung | ||||
Dynamische Lichtstreuung |